Авторы

  • М Каримова
    Ташкентский педиатрический медицинский институт image/svg+xml
  • Н Абдуллаева
    Ташкентский педиатрический медицинский институт image/svg+xml

Биографии авторов

  • М Каримова, Ташкентский педиатрический медицинский институт
    факультет 1 педиатрии и народной медицины 215 группы направлении 1 педиатрии
  • Н Абдуллаева, Ташкентский педиатрический медицинский институт
    Научный руководитель: ассистент кафедры медицинской и биологической химии, медицинской биологии, общей генетики

DOI:

https://doi.org/10.71337/inlibrary.uz.research-in-eyes-youth.33781

Ключевые слова:

микробный биоценоз урогенитальные инфекции количественная полимеразная цепная реакция

Аннотация

Полимеразная цепная реакция (ПЦР) — экспериментальный метод молекулярной биологии, способ значительного увеличения малых концентраций определённых фрагментов нуклеиновой кислоты (ДНК) в биологическом материале. ПЦР - метод молекулярной диагностики, приобрел огромное практическое значение, особенно актуально в гинекологии и урологии. Применяется в диагностике инфекционных заболеваний - бактериальной или вирусной природы, включающих ИИИП (инфекции, передающиеся половым путем).

background image

42

РОЛЬ ПЦР МЕТОДА В ГИНЕКОЛОГИИ

Каримова М.М., факультет 1 педиатрии и народной медицины 215 группы

направлении 1 педиатрии

Научный руководитель: Абдуллаева Н.К, ассистент кафедры медицинской и

биологической химии, медицинской биологии, общей генетики, ТашПМИ

Актуальность:

Полимеразная цепная реакция (ПЦР) — экспериментальный метод

молекулярной биологии, способ значительного увеличения малых концентраций
определённых фрагментов нуклеиновой кислоты (ДНК) в биологическом материале.

ПЦР - метод молекулярной диагностики, приобрел огромное практическое

значение, особенно актуально в гинекологии и урологии. Применяется в диагностике
инфекционных заболеваний - бактериальной или вирусной природы, включающих ИИИП
(инфекции, передающиеся половым путем).

Цель:

ПЦР позволяет диагностировать наличие долго растущих возбудителей,

урогенитальных инфекций, передающихся половым путем (ИППП).Методом ПЦР
успешно диагностируют следующие вирусные заболевания: вирусный гепатит, СПИД,
токсоплазмоз, хламидиоз, уреаплазмоз, гонорея, герпес и др. Особенно эффективен метод
ПЦР для диагностики трудно культивируемых, некультивируемых и скрыто
существующих форм микроорганизмов, с которыми часто приходится сталкиваться при
латентных и хронических инфекциях, поскольку этот метод позволяет избежать
сложностей, связанных с выращиванием таких микроорганизмов в лабораторных
условиях. Применение ПТ ЦР-диагностики также очень эффективно в отношении
возбудителей с высокой антигенной изменчивостью и внутриклеточных паразитов.

Методы результаты:

Обычно при проведении ПЦР выполняется 20 - 35 циклов,

каждый из которых состоит из трех стадий. Двухцепочечную ДНК-матрицу нагревают до
94 - 96°C на 0,5 - 2 минуты, чтобы цепи ДНК разошлись. Эта стадия называется
денатурацией — разрушаются водородные связи между двумя цепями. Когда цепи
разошлись, температуру понижают, чтобы праймеры могли связаться с одноцепочечной
матрицей. Эта стадия называется отжигом. Температура отжига зависит от праймеров и
обычно выбирается на 4 - 5°С ниже их температуры плавления. Время стадии — 0,5 - 2
минут. ДНК-полимераза реплицирует матричную цепь, используя праймер в качестве
затравки. Это — стадия элонгации. Температура элонгации зависит от полимеразы. Часто
используемые полимеразы наиболее активны при 72°C. Время элонгации зависит как от
типа ДНК-полимеразы, так и от длины амплифицируемого фрагмента. После окончания
всех циклов часто проводят дополнительную стадию финальной элонгации, чтобы
достроить все одноцепочечные фрагменты. Эта стадия длится 10 - 15 мин.

Для проведения ПЦР требуются следующие компоненты: ДНК -матрица,

содержащая тот участок ДНК, который требуется амплифицировать; два праймера,
комплементарные концам требуемого фрагмента; термостабильная ДНК-полимераза;
дезоксинуклеотидтрифосфаты (A, G, C,

T); ионы Mg2+, необходимые для работы

полимеразы; буферный раствор. ПЦР проводят в амплификаторе — приборе,
обеспечивающем периодическое охлаждение и нагревание пробирок.

Вывод:

Таким образом, в качестве достоинства метода ПЦР, можно перечислить

высокую чувствительность исследования, специфичность анализа, экономия времени и
широта исследуемого клинического материала, универсальность и эффективность метода
ПЦР.

Список литературы:

1.

Юлдашева, Сурая Зарифовна, and Мунаввар Холмухамедовна Тиллашайхова.

"Интеграция пищеварительно-всасывательной и иммунной функции в слизистой оболочке


background image

43

тонкой кишки и регуляция гомеостаза." European journal of biomedical and life sciences 2 (2017): 3-
7.

2.

Yuldasheva, S., and Yu Rasul-Zade. "THE EFFECT OF FRAME-BY-FRAME MONITORING

OF EMBRYOS ON OBSTETRIC AND PERINATAL OUTCOMES IN SINGLETON PREGNANCY
IN ASSISTED REPRODUCTIVE TECHNOLOGY PROGRAMS." Science and innovation 2.D11
(2023): 273-281.

3.

Zarifovna, Yuldasheva Suraya, and Yulduz Gulyamovna Rasul-zade. "Impact of Frame-By-

Frame Monitoring of Embryos on Obstetric And Perinaaaaatal Outcomes In Singleton Pregnancies In
Assisted Reproductive Technology Programs." Journal of Advanced Zoology 44 (2023).

Библиографические ссылки

Юлдашева, Сурая Зарифовна, and Мунаввар Холмухамедовна Тиллашайхова. "Интеграция пищеварительно-всасывательной и иммунной функции в слизистой оболочке тонкой кишки и регуляция гомеостаза." European journal of biomedical and life sciences 2 (2017): 3-7.

Yuldasheva, S., and Yu Rasul-Zade. "THE EFFECT OF FRAME-BY-FRAME MONITORING OF EMBRYOS ON OBSTETRIC AND PERINATAL OUTCOMES IN SINGLETON PREGNANCY IN ASSISTED REPRODUCTIVE TECHNOLOGY PROGRAMS." Science and innovation 2.D11 (2023): 273-281.

Zarifovna, Yuldasheva Suraya, and Yulduz. Gulyamovna Rasul-zade. "Impact of Frame-By-Frame Monitoring of Embryos on Obstetric And Perinaaaaatal Outcomes In Singleton Pregnancies In Assisted Reproductive Technology Programs." Journal of Advanced Zoology 44 (2023).